Методические рекомендации по лабораторной диагностике легионеллеза (болезни легионеров) Методические рекомендации подготовлены сотрудниками Научно-исследовательского института эпидемиологии и микробиологии им. Н. Ф. Гамалеи амн СССР



Скачать 79.15 Kb.
страница4/14
Дата23.09.2018
Размер79.15 Kb.
ТипМетодические рекомендации
1   2   3   4   5   6   7   8   9   ...   14
II. БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ
Возбудитель редко удается выделить от больного. Для исследования берут материал

бронхоскопии, плевральную жидкость, легочный экссудат. Описаны единичные случаи выделения

возбудителя из мокроты, крови. Значительно чаще выделяют возбудитель из секционного материала

(легочной ткани). При бактериологическом исследовании на легионеллез применяют посев на

специальные питательные среды и биологическую пробу на чувствительных животных.
1. Посев на питательные среды
Возбудитель легионеллеза не растет на обычных питательных средах, в том числе очень богатых

(мясо-пептонный агар, агар Хоттингера, триптически-соевый агар, среды на сердечно-мозговом

экстракте и др.).
На шоколадном и кровяном агаре возможен слабый рост микроба в первой генерации при

массовых посевах культуры.


Выделение возбудителя от больных проводят на специальных питательных средах,

применяемых для культивирования легионелл с обязательным добавлением L-цистеина и

растворимого пирофосфата железа. Наибольшее распространение получила угольно-дрожжевая

среда. Хорошие результаты получены при замене дрожжевого экстракта на сернокислый гидролизат


Не является официальной версией, бесплатно предоставляется членам Ассоциации лесопользователей Приладожья, Поморья и Прионежья – www.alppp.ru. Постоянно действующий третейский суд.
рыбокостной муки. При этом концентрация добавляемого в среду L-цистеина снижается в 2 раза. Для

предотвращения пророста посторонней микрофлоры при исследовании контаминированного

материала к среде добавляют антибиотики (полимиксин В 40 ед./мл + пенициллин 0,5 мкг/мл +

амфотерицин Б 80 мкг/мл).


При подготовке к высеву жидкие образцы разводят 1:10 фосфатным буфером (pH - 7,2).

Высевают разведенный и цельный образец в количестве 0,2 мл. При исследовании секционного

материала кусочек ткани массой 1 г растирают в стерильной ступке пестиком и готовят 10-

процентную суспензию ткани в фосфатном буфере (pH - 7,2). Приготовленную суспензию разводят

1:50 тем же буфером и высевают на среды.
Рост колоний из клинического материала наблюдается не ранее чем через 4 - 5 суток.

Максимальное количество видимых колоний обычно вырастает на 8 - 10 сутки. При подозрении на

рост легионелл колонии пересевают на ту же среду и на среду, не поддерживающую рост легионелл

(контрольную среду). В качестве контрольной среды обычно используют агар Хоттингера или

триптический соевый агар. Рост колоний во втором пассаже на угольно-дрожжевой или рыбно-

костной среде при отсутствии роста на контрольной среде с большой долей вероятности позволяет

заподозрить легионеллез и указывает на необходимость дальнейшей идентификации.
С целью получения чистой культуры возбудителя легионеллеза от биопробных морских свинок

рекомендуется производить посев селезенки биопробного животного одновременно на 3 чашки со

следующими средами:
1. Угольно-дрожжевой агар.
2. Угольно-дрожжевой агар с антибиотиками.
3. Агар Хоттингера.
Угольно-дрожжевая среда может быть заменена на рыбно-костную среду. При гибели

животного от легионеллеза посев должен быть положительным на первых двух чашках. При гибели

от другой инфекции рост возбудителя будет отмечаться на 1-ой и 3-ей чашке и отсутствовать во 2-ой.
    Угольно-дрожжевая  среда:  дрожжевой  экстракт  -  10 г,

активированный


уголь  -  2  г,  L-цистеин - 0,4 г, пирофосфат железа растворимый -

0,25 г,
K HPO  - 0,85 г, K H PO  - 1,0 г, агар - 17 г, дист. H O - 980 мл.


2   4            1 2  4                              2
Все компоненты среды, кроме L-цистеина и пирофосфата железа, добавляют к 980 мл дист.

воды, растворяют, доводят до кипения и автоклавируют 15 минут при температуре 121 °С. Среду

охлаждают до 50 °С и добавляют свежеприготовленные растворы L-цистеина (0,4 г в 10 мл дист.

воды) и пирофосфата железа (0,25 г в 10 мл дист. воды), профильтрованные через мембранные

фильтры (с диаметром пор. 0,45 мкм). pH среды доводят до 6,9 при 50 °С добавлением 1 н KOH или 1

н HCl. Среду быстро разливают, слегка взбалтывая флакон для равномерного распределения

активированного угля.
Разлитую среду можно хранить в чашках, помещенных в пластиковые или металлические

контейнеры, в течение 2-х недель.


Рыбо-костная среда: готовится так же, как и угольно-дрожжевая, за исключением того, что в

качестве питательной основы вместо дрожжевого экстракта используется сернокислый гидролизат


Не является официальной версией, бесплатно предоставляется членам Ассоциации лесопользователей Приладожья, Поморья и Прионежья – www.alppp.ru. Постоянно действующий третейский суд.
рыбной кормовой муки - 10 г. Количество L-цистеина, добавляемого в среду, снижается до 0,2 г.

Каталог: law -> zdravoohranenie--fizicheskaja-kultura-i-sport--turizm -> zdravoohranenie
zdravoohranenie -> Применение ингибиторов ангиотензин-превращающего фермента в нефрологической клинике
zdravoohranenie -> Утверждены Минздравом СССР лабораторная диагностика хламидиозов
zdravoohranenie -> Рекомендации по организации рационального и диетического питания в санаториях-профилакториях
zdravoohranenie -> Вопросы клиники, диагностики, лечения, экспертизы трудоспособности и организации медицинской помощи при интоксикации бензолом
zdravoohranenie -> Методические рекомендации по сопоставлению классификаций болезней, травм и причин смерти седьмого, восьмого и девятого пересмотра
zdravoohranenie -> Методические рекомендации инструктивно-методические рекомендации подготовлены кафедрой инфекционных болезней
zdravoohranenie -> Наставление по лечению и профилактике болезней, вызываемых простейшими кишечника

Скачать 79.15 Kb.

Поделитесь с Вашими друзьями:
1   2   3   4   5   6   7   8   9   ...   14




©zodomed.ru 2024


    Главная страница