Утверждены Минздравом СССР лабораторная диагностика хламидиозов

заболевания человека и животных.

антропонозных хламидиозов. Особенно большое значение приобретает урогенитальные

хламидийные инфекции, которые относятся к числу наиболее распространенных заболеваний,

передающихся половым путем. Они поражают мужчин и женщин, все чаще регистрируются у

новорожденных, оказывают существенное влияние на репродуктивную функцию и часто являются

причиной трубного бесплодия.

комплексов с высокой концентрацией животных, увеличивается потенциальная возможность

возникновения крупных вспышек зоонозных хламидиозов, которые не только представляют

серьезную угрозу для здоровья человека, но и наносят значительный экономический ущерб.

народнохозяйственное значение. Успешная организация борьбы с этими заболеваниями возможна

лишь при условии их своевременного и полного выявления, а это, учитывая многообразие

клинических форм, протекающих без патогномоничной симптоматики, представляет значительные

трудности. В этой связи решающее значение в постановке диагноза приобретают методы

лабораторной диагностики.

диагностики антропонозных и зоонозных хламидиозов с учетом возможности практической

лабораторной службы.
1. КРАТКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ХЛАМИДИЙ
Хламидии - грамотрицательные бактерии с облигатным внутриклеточным паразитизмом,

характеризующиеся широким спектром естественных хозяев. Биологическое своеобразие хламидий,

выражающееся в энергозависимом паразитизме и уникальном цикле развития, определяет

самостоятельное положение этих микроорганизмов в системе прокариотов.

Chlamydiaceae содержащее один род Chlamydia, состоящий из 3 видов: C. trachomatis, C. psittaci, C.

pneumoniae.
Вид C. trachomatis - объединяет микроорганизмы, вызывающие заболевания, главным образом, у

человека (антропонозные хламидиозы). Они обусловливают разнообразную патологию

урогенитального тракта, глаз и связанную с ней хламидийную инфекцию иной локализации у

мужчин, женщин и детей.

могут вызывать зоонозные хламидиозы (орнитоз, генерализованные инфекции, связанные с

сельскохозяйственными и домашними животными).
Вид C. pneumoniae - включает микроорганизмы, вызывающие респираторную патологию и

передающиеся от человека к человеку <*>.

тельца. Элементарные тельца - инфекционная форма, мелкие ригидные сферические клетки с

плотным нуклеоидом, диаметр 0,25 - 0,35 мкм. Окрашиваются по Романовскому-Гимзе в фиолетово-

красный цвет.

рыхлым нуклеоидом, диаметр 0,6 - 1,5 мкм. Окрашиваются по Романовскому-Гимзе в синий цвет.

первичных или перевиваемых культурах клеток; некоторые штаммы хламидий - в организме белых

мышей, чаще при заражении в мозг. На искусственных питательных средах хламидии не

размножаются. Их паразитизм обусловлен выраженной метаболитической зависимостью от клетки

хозяина.
Цикл развития хламидий протекает в клетке-хозяине в "цитоплазматическом включении",

представляющем собой микроколонию микроорганизма. В процессе цикла развития происходит

преобразование элементарных телец в ретикулярные. Последние размножаются бинарным делением

и преобразуются через переходные формы в элементарные тельца нового поколения

микроорганизмов. Цитоплазматические включения и морфологические структуры хламидий

выявляются при световой, люминесцентной и фазовоконтрастной микроскопии.

комплекса. Родоспецифический термостабильный, липополисахаридный комплекс, характерный для

всех представителей рода. Его детерминантной группой является кислый полисахарид.

Родоспецифический антигенный комплекс локализуется в клеточной стенке хламидий.

Видоспецифические и типоспецифические термолабильные белковые фракции. Видоспецифический

антиген определяет принадлежность штаммов к соответствующему виду. Типоспецифические

антигены позволяют дифференцировать различные серовары (серотипы) хламидий внутри вида.
Хламидии чувствительны к антибиотикам тетрациклинового ряда, макролидам, рифампицину

(рифадину), являющимися основными средствами этиотерапии хламидиозов. Пенициллин и его

производные вызывают образование Л-подобных форм микроорганизмов, способных реверсировать

в инфекционные.

15 мин., при 80 °C - через 10 мин., при кипячении - через 3 мин. Материал, содержащий штаммы C.

psittaci, может быть обеззаражен в течение 3 часов при комнатной температуре: фенолом (1% р-р),

хлорамином (3% р-р), лизолом (3% р-р), марганцевокислым калием (1:500), формалином с

содержанием 38 - 40% формальдегида.
"Урогенитальные штаммы" хламидий, C. trachomatis, высокочувствительны к 70° этанолу,

растворам - 2% лизола, 0,05% серебра нитрата, 0,1% калия йодида, 0,5% калия перманганата, 25%

перекиси водорода и инактивируются при комнатной температуре в течение 2 сут. Хлорамин в 3%

концентрации инактивирует в течение 1 мин.

заболеваний иной локализации.

серологические методы исследования. Техника лабораторных исследований приведена в

Приложении I.
2.1.1. Бактериоскопический метод.
Бактериоскопическое исследование предполагает выявление хламидий, их морфологических

структур и антигенов в пораженных клетках (клиническом материале).

слизистых оболочек мочеполовых (уретра, шейка матки и т.п.) и других органов (конъюнктива,

прямая кишка и пр.) при экстрагенитальных формах. Из исследуемого материала готовят мазки,

которые окрашивают по Романовскому-Гимзе. Цитоплазматические включения хламидий (тельца

Гальберштедтера-Провачека) содержат или крупные ретикулярные тельца, или мелкие элементарные

тельца. Они по цвету и внутренней структуре отличаются от ядра клетки и цитоплазмы. Для

постановки диагноза хламидийной инфекции достаточно обнаружить одно типичное

цитоплазматическое включение. Метод характеризуется сравнительно низкой чувствительностью,

позволяет диагностировать от 10 - 20% случаев урогенитальной инфекции. При хламидийной

патологии глаз чувствительность способа составляет 90 - 100%.

антигенов хламидий в цитоплазматических включениях в соскобных препаратах урогенитального

тракта значительно увеличивает чувствительность и специфичность метода. С этой целью можно

использовать как прямой, так и непрямой иммунофлуоресцентный метод. Первый предполагает

обработку препарата непосредственно специфическими люминесцирующими моно- или

поликлональными антителами, второй - иммунной и антивидовой флуоресцирующей сыворотками.

При люминесцентной микроскопии антигены хламидий выявляют на красном или оранжевом фоне

(при контрастировании синькой Эванса или родамином) цитоплазмы эпителиальных клеток в виде

внутриклеточных включений ярко-зеленого цвета.
Метод отличается высокой информативностью и уступает по чувствительности только

бактериологическому (выделение хламидий в клеточных культурах).

заражения куриных эмбрионов или клеточных культур с последующей идентификацией возбудителя.

Исследуемый материал тот же, что и при бактериоскопическом методе. Для удаления сопутствующей

бактериальной флоры клинический материал помещается в специальные транспортные среды,

содержащие антибиотики, не влияющие на жизнеспособность хламидий. Способ может быть

использован в течение всего периода заболевания. Особенно эффективен при острых формах, на

ранних этапах инфекции до начала антибиотикотерапии.
2.1.2.1. Выделение хламидий на куриных эмбрионах.
Исследуемым материалом заражают 6 - 8-дневные куриные эмбрионы в полость желточного

мешка. Наличие возбудителя определяют микроскопией мазков - отпечатков тканей оболочек

желточного мешка, окрашенных по Маккиавелло, а также специфическими люминесцирующими

поли- и моноклональными антителами.

929, McCoy, Hela), предварительно обработанном ДЕАЕ-декстраном (30 мкг/мл) в течение 30 мин.

При инокуляции исследуемого материала на монослой применяют метод принудительной адсорбции

- центрифугирование при 3000 об./мин. в течение часа. После центрифугирования

неадсорбированный материал удаляют при промывании средой 199 без сыворотки и дальнейшее

культивирование в течение 48 - 72 часов проводят при t = 36 °C в среде 199 с 5% фетальной

сыворотки, 5% 0,5 М раствора глюкозы и 0,5 - 1,0 мкг/мл циклогексимида.
Оценку результатов проводят через 48 - 72 ч методами ПИФ (при использовании

специфических люминесцирующих поли- и моноклональных антител), МГГ (при окраске Май-

Грюнвальд-Гимза), Люголя (окраска раствором Люголя).
При исследовании препаратов инфицированных культур клеток хламидии выявляются в виде

характерных цитоплазматических включений, окрашенных в соответствующий методу цвет.

Выявление хотя бы одного цитоплазматического включения, имеющего специфическое окрашивание,

форму и структуру достаточно для определения хламидийной инфекции в исследуемом объекте. По

специфичности метод диагностического выделения хламидий в культуре клеток является эталонным.
2.1.3. Серологические методы диагностики.
Методы серологической диагностики основаны на выявлении специфических антител в

сыворотке крови, а также в секретах больных и переболевших. Для серодиагностики обычно

используют реакцию связывания комплемента (РСК), непрямой иммунофлуоресценции (РНИФ) и

реакцию непрямой гемагглютинации (РНГА). Учитывая низкую иммуногенность "урогенитальных

штаммов" хламидий при локализованных формах инфекции, возможность наличия антител,

связанных с ранее перенесенной хламидийной инфекцией, необходимо исследовать несколько проб

сыворотки в динамике заболевания с интервалом в 2 - 3 недели. Первую пробу забирают в момент

обращения больного к врачу. Интерпретацию результатов серологического обследования следует

проводить в совокупности с анализом клинико-эпидемиологических данных, а также с учетом

особенностей использованного серологического теста. Оптимальным является параллельное

применение нескольких серологических реакций. Эти серологические тесты могут быть также

использованы для проведения эпиднадзора за хламидиозами.

предприятием по производству бактерийных препаратов Минмедпрома СССР. В РНГА и РНИФ -

годы, используются экспериментальные серии соответствующих препаратов, подготовленных к

промышленному выпуску. Техника постановки этих реакций приведена в Приложении II.
2.1.3.1. Реакция связывания комплемента.
РСК проводят с родоспецифическим антигеном возбудителя орнитоза. Эту реакцию используют

для диагностики так называемых "генерализованных" (осложненных) форы урогенитальных

хламидиозов, венерической лимфогранулемы и ряда экстрагенитальных хламидийных поражений

(болезнь Рейтера, пневмония новорожденных). При локализованных поражениях (уретрит, цервицит

и т.п.) РСК недостаточно чувствительна.
2.2. Методы лабораторной диагностики орнитоза и других зоонозных хламидиозов <*> у людей.
--------------------------------
<*> Поскольку методы диагностики орнитоза и других зоонозных хламидиозов аналогичны, то в

последующем изложении материала использован только один термин - орнитоз.

кожно-аллергический методы исследования. Техника лабораторных исследований и постановки

полной аллергической пробы приведены в Приложении I.
2.2.1. Бактериологическое исследование.
Возбудитель орнитоза по патогенности для человека относится к микроорганизмам II группы

("Положение о порядке учета, хранения, обращения, отпуска и пересылки культур бактерий, вирусов

риккетсий, грибов, простейших, микоплазм, бактерийных токсинов, ядов биологического

происхождения" утверждено МЗ СССР 18.05.1979), поэтому выделение возбудителей может

проводиться только в лабораториях медицинского и ветеринарного профиля, имеющих разрешение

режимной комиссии на работу с возбудителями второй группы патогенности со строгим

соблюдением соответствующих режимных условий ("Инструкция о противоэпидемическом режиме

работы с материалом, зараженным или подозрительным на зараженность возбудителями

инфекционных заболеваний I - II группы патогенности" утверждена МЗ СССР 29.06.1978).
Для выделения возбудителя орнитоза от больных в качестве исследуемого материала

используют кровь или мокроту. Изоляция возбудителя возможна из крови на протяжении первых 7 -

10 дней, из мокроты - 14 - 20 дней заболевания. Применение антибиотиков широкого спектра

действия для лечения больных значительно снижает возможность выделения возбудителя орнитоза.

При исследовании секционного материала чаще используют кусочки печени, легкого.
Патологический материал, полученный от людей, используют для заражения мышей чаще в

мозг или внутрибрюшинно и развивающихся куриных эмбрионов - в желточный мешок. Наличие

возбудителя контролируют микроскопией мазков-отпечатков мозговой ткани (или внутренних

органов) зараженных мышей и оболочек желточных мешков зараженных куриных эмбрионов,

окрашенных различными способами: по Романовскому-Гимзе, Маккиавелло, акридином оранжевым

или специфическими люминесцирующими поли- или моноклональными антителами.

монослойных культурах различных клеток (фибробласты куриных эмбрионов, клетки L-929, Hela-229,

Hep-2 и другие).
В этом случае первичными критериями диагностического выделения хламидий является
Не является официальной версией, бесплатно предоставляется членам Ассоциации лесопользователей Приладожья, Поморья и Прионежья – www.alppp.ru. Постоянно действующий третейский суд.
обнаружение типичных для этих микроорганизмов морфологических и тинкториальных

характеристик, а также содержание родоспецифического хламидийного антигена, определяемого в

реакции иммунофлуоресценции.
2.2.2. Серологические методы исследования.
Серологические методы являются основными средствами практической диагностики орнитоза.

Они могут применяться без ограничений в различных лабораториях медицинского профиля.

для которой (антиген специфический, контрольный и диагностическую сыворотку) выпускает

Одесское предприятие по производству бактерийных препаратов Минмедпрома СССР.
В последние годы разработаны, успешно апробированы и другие, более информативные тесты

(реакция непрямой гемагглютинации - РНГА, реакция непрямой иммунофлуоресценции - РНИФ,

иммунофлуоресцентная реакция микроагглютинации - ИФРМА, иммуноферментный метод - ИФА), в

них используются экспериментальные серии препаратов. Техника постановки этих реакций

приведена в Приложении II.
Для серологической диагностики орнитоза у людей наиболее широко применяют РСК, РНГА и

РНИФ.
В целях дифференциации серологических показателей текущей орнитозной инфекции от

анамнестических реакций и естественной иммунизации, серологическое обследование на орнитоз

необходимо проводить неоднократно, с интервалом 10 - 14 дней. Наиболее информативным является

использование комплекса серологических реакций. Бесспорным основанием для постановки

диагноза орнитоза у больных является обнаружение сероконверсии - 4-кратное повышение титра

хламидийных антител. Вместе с тем более низкие показатели титра антител во 2 или 3 пробе

сыворотки могут быть следствием косвенного влияния интенсивной антибиотикотерапии. В этих

случаях достоверное увеличение титра антител в 2 - 3 раза может оцениваться в качестве

диагностического показателя.

особенностей каждого конкретного случая, во взаимосвязи с клиническими показателями и

эпидемической ситуацией.
2.2.2.1. Реакция связывания комплемента (РСК).
РСК ставят с родоспецифическим антигеном возбудителя орнитоза (выпускается Одесским

предприятием по производству бактерийных препаратов Минмедпрома СССР).

обычно в невысоком титре (1:16). Нарастание титра антител наблюдают в течение 4 - 6 недель и их

снижение - через 3 - 6 месяцев. Антитела нередко выявляют в крови переболевших 1 - 2 года, а

иногда и более длительный срок.

показатель их титра 1:64 может оцениваться диагностическим при наличии соответствующих

клинико-эпидемиологических данных. Определение в этих условиях меньших титров антител

требует индивидуального анализа и может быть использовано для подтверждения клинико-

эпидемиологического диагноза. При обследовании "профессионально угрожаемых" коллективов

комплементсвязывающие антитела могут обнаруживаться и в сыворотках клинически здоровых

людей. Их выявление на фоне благополучной эпидситуации, при отсутствии клинически

выраженных случаев орнитоза, может быть связано с ранее перенесенным орнитозом, с

зависимость от стажа работы обследуемых на предприятии), а также с другими хламидийными

инфекциями.
2.2.3. Кожно-аллергический метод.
Для диагностики орнитоза у людей может быть использована кожно-аллергическая проба с

орнитозным аллергеном (выпускается Одесским предприятием по производству бактерийных

препаратов Минмедпрома СССР). Внутрикожная проба с орнитозным аллергеном становится

положительной с первых дней заболеваний у 87 - 95% больных, сохраняясь до года и более. Она

является чувствительным индикатором эпидемиологического неблагополучия в коллективах,

профессионально связанных с птицей. С увеличением стажа работы повышается вероятность

обнаружения сенсибилизации к орнитозному аллергену и процент положительных находок по

внутрикожной пробе возрастает. Положительные реакции могут определяться у здоровых лиц,

профессионально связанных с птицами, что можно объяснить перенесенным в прошлом

заболеванием, латентной формой инфекции, естественной иммунизацией.

подтверждается отсутствием реакции на введение контрольного субстрата на другой.

реакций, оценку результатов кожной пробы у людей проводят при комплексном учете данных других

диагностических тестов и клинико-эпидемиологических показателей.
Приложение I
ТЕХНИКА ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ
1. ДИАГНОСТИКА УРОГЕНИТАЛЬНЫХ ХЛАМИДИОЗОВ И СВЯЗАННЫХ
С НИМИ ЗАБОЛЕВАНИЙ ИНОЙ ЭТИОЛОГИИ
1.1. Меры предосторожности.
Сбор и обработку клинического материала для выявления или выделения C. trachomatis

проводят, соблюдая режим работы бактериологических лабораторий. Необходимо исключить

возможность загрязнения исследуемым материалом рук лабораторных работников, его попадание в

глаза, нос, рот.

Фолькмана, соблюдая правила асептики. Наружные половые органы дезинфицируют, выделения

удаляют тампоном. Соскобы делают из глубины канала, со всех четырех квадрантов. Соскобы шейки

матки берут после удаления слизистой пробки из глубины и влагалищной части. В материале должно

быть минимальное количество выделений, примеси крови. При экстрагенитальных поражениях

соскобный материал получают аналогичным способом.

стекла, подсушивают и фиксируют. Для окраски по методу Романовского-Гимзы фиксируют смесью

Никифорова (эфир + спирт, 1:1) в течение 10 мин., для окраски флуоресцирующими поли- или

моноклональными антителами - холодным ацетоном (х.ч.) в течение 10 мин.

исследования. Его тщательно ресуспендируют в 1 мл (при выделении хламидий в культуре клеток)

или в 2 - 3 мл (при выделении в куриных эмбрионах) охлажденной стерильной транспортной среде с

бусами, пересылают в лабораторию при температуре +4 °C. После трехчасовой инкубации (при 4 °C)

исследуемого материала с антибиотиками проводят заражение. В качестве транспортной среды

используют 199 среду с 10% фетальной сывороткой крупного рогатого скота. В состав транспортной

среды вводят антибиотики: стрептомицин (100 мкг/мл), нистатин (25 мкг/мл) и гентамицин (50

мкг/мл) для подавления сопутствующей флоры.

стерильную пробирку. Сыворотку собирают после ретракции сгустка до наступления гемолиза,

транспортируют в охлажденном состоянии (+4 °C), после ампулирования замораживают (-20 °C).

Для исследования необходимо брать 2 - 3 пробы с интервалом в 10 - 14 дней, первую пробу - в

начале заболевания.
Секреты половых желез собирают либо в нативном виде, либо с помощью полосок

фильтровальной бумаги (5 x 20 мм). Капли секрета или полоски бумаги после насыщения помещают в

отдельные сосуды, содержащие 0,2 мл фосфатного буферного раствора pH - 7,2. Материал

транспортируют и сохраняют так же, как сыворотки. Первичное разведение учитывают при

последующем титровании.
1.3. Окраска соскобных препаратов для бактериоскопического исследования.
1.3.1. Окраска по методу Романовского-Гимзы.
На исследуемый препарат наносят 2 - 3 капли неразведенной краски и оставляют на 5 минут.

Затем добавляют дистиллированную воду из расчета 10 капель на 1 каплю краски. Через 30 минут

промывают водой и дифференцируют в подкисленном 96° этаноле (1 - 2 капли ледяной уксусной к-

ты на 10 мл этанола) 1 - 3 сек. до голубой окраски препарата.

этиловым спиртом (96°) 10 мин.;

моноклональных антител в рабочем разведении, в смеси с контрастирующим реагентом (бычий

альбумин, меченный родамином в рабочем разведении, или синька Эванса в конечном разведении

1:10000);

раствором

7,2;
                             2  4            2   4         2

0,01 М
раствора  Na HPO ,  pH  -  8,5)  и монтируют препарат, накладывая

покровное
            2   4
стекло;
- удаляют избыток глицерина фильтровальной бумагой и исследуют препарат в

люминесцентном микроскопе при комбинации светофильтров (для ЛМ-2) ФС 1-2, БС 8-2, СЭС-7-2,

ЖС-18 и масляной иммерсии при увеличении 600 - 1000х.
При исследовании в микроскопе клинических препаратов хламидии выявляются в виде

характерных цитоплазматических включений, окрашенных в ярко-зеленый цвет, либо в виде

отдельных ярко-зеленых элементарных и ретикулярных телец, четко выделяющихся на красном

(синька Эванса) или оранжевом (родамин) фоне контрастно окрашенных эпителиальных клеток, или

на темном фоне препарата.
1.3.2.2. Метод непрямой иммунофлуоресценции (НИФ).
НИФ-метод может быть использован с той же целью (1.3.2.1) при отсутствии

люминесцирующих хламидийных поли- или моноклональных антител и наличии сыворотки

(человека, животных), или м-АТ к родоспецифическому антигену хламидий. Антивидовые сыворотки

(против глобулинов человека, животных), меченные ФИТЦ, выпускаются производственным

предприятием НИИЭМ им. Н.Ф. Гамалеи АМН СССР;
- на препарат после фиксации наносят 25 - 30 мкл сыворотки, содержащей хламидийные

антитела;

1.3.2.1);

метода (см. 1.3.2.1).

и НИФ-методами, в тех же условиях исследуют материал, заведомо не содержащий микроорганизмы,

а также проводят замену иммунной хламидийной сыворотки на неиммунную. Специфическое

свечение в обоих случаях должно отсутствовать.

развивающихся куриных эмбрионов, которые инкубируют при +35 - 36 °C. Обычно заражают 8 - 10

эмбрионов на 1 исследуемую пробу. При отсутствии специфической гибели эмбрионов спустя 4 - 10

суток после заражения, под контролем бактериоскопии проводят до 3 слепых пассажей.

цитоплазматических включений, содержащих элементарные, ретикулярные тельца, и выявлении в их

составе родоспецифического антигена. Для этого готовят мазки-отпечатки из желточных мешков

куриных эмбрионов, которые окрашивают по Маккиавелло, а также люминесцирующими антителами

(прямой и непрямой метод флуоресцирующих антител).
Обнаружение типичных цитоплазматических включений и родоспецифического хламидийного

антигена являются основными критериями диагностического выделения возбудителя.

следующие реагенты: 0,25% раствор основного фуксина (0,25 г краски растворяют в 100 мл ФБР или

бидистиллированной воды); 0,5% раствор лимонной кислоты (0,5 г лимонной кислоты растворяют в

200 мл бидистиллированной воды, свежеприготовленной); 1% раствор метиленового синего (1 г

красителя растворяют в 100 мл бидистиллированной воды).
Подсушенные на воздухе предметные стекла с мазками-отпечатками фиксируют над пламенем

горелки. Затем на них наносят отфильтрованный через бумажный фильтр раствор фуксина на 5

минут. Препарат слегка и равномерно нагревают над пламенем горелки. Краситель смывают

проточной водой. Затем препарат быстро дифференцируют раствором лимонной кислоты (несколько

секунд), вновь промывают проточной водой, докрашивают раствором метиленового синего (10 - 15

сек.), промывают, подсушивают фильтровальной бумагой и просматривают в световом микроскопе

при масляной иммерсии (об. x 90, ок. x 7). Морфологические структуры хламидий в виде мелких

красных округлых образований (элементарные тельца) и крупных синих (ретикулярные тельца) четко

выявляются на голубом фоне препарата. Индикацию родоспецифического антигена хламидий

проводят прямым (см. 1.3.2.1) и непрямым (см. 1.3.2.2) методами флуоресцирующих антител.

1 мл рабочего раствора М.В. 500000 ДЕАЕ-декстрана (30 мкг/мл), удаляемого после 30 мин. контакта

с клетками при комнатной температуре <*>. Исследуемый клинический материал встряхивают и

вносят по 0,2 мл в 4 - 6 плоскодонных пробирок, наслаивая на монослой клеток. Пробирки затем

центрифугируют на горизонтальном роторе (2400 1 час, при +30 °C). Инокулят удаляют, 2 раза
Не является официальной версией, бесплатно предоставляется членам Ассоциации лесопользователей Приладожья, Поморья и Прионежья – www.alppp.ru. Постоянно действующий третейский суд.
отмывают средой 199 и вносят 1 мл питательной среды (среда 199 с добавлением циклогексимида в

концентрации 0,6 мкг/мл, 5% фетальной сыворотки крупного рогатого скота и 5% 0,5 М раствора

глюкозы). Культуру клеток инкубируют при температуре +35 - 36 °C до 72 часов.
--------------------------------
<*> Можно использовать и другие клеточные культуры (McCoy, Hela-229), а также обрабатывать

клеточный монослой после заражения антиметаболитами (см. соответствующие руководства).

типичных цитоплазматических включений при окраске по Май-Грюнвальду-Гимзе, а также

родоспецифического антигена хламидий при окраске флуоресцирующими поли- и моноклональными

антителами.

Покровные стекла из двух пробирок извлекают, споласкивают ФСБР (см. 1.3.2.1), подсушивают на

воздухе и фиксируют соответственно по следующему методу окраски: Май-Грюнвальду-Гимзе (см.

1.3.1) или флуоресцирующими поли- и моноклональными антителами, ПИФ (см. 1.3.2.1), НИФ-

методами (см. 1.3.2.2).
При отсутствии цитоплазматических включений в монослое первично зараженных клеток

можно провести 1 - 2 слепых пассажа.

антителами в присутствии комплемента. С помощью 2-ой индикаторной фазы реакции, за счет

добавления гемолитической системы определяется связывание комплемента образовавшимся

комплексом антиген-антитело. Отсутствие гемолиза свидетельствует о положительной РСК.

Реакцию ставят в лунках полистироловых панелей или в стандартных серологических пробирках.
1.5.1.1. Ингредиенты реакции
- специфический и контрольный диагностикумы (антигены);
- исследуемая и иммунная хламидийная сыворотка;
- комплемент;
- гомолитическая сыворотка;
- эритроциты барана;
- физиологический раствор - pH 7,0 (8,5 г химически чистого NaCl на 1 л бидистиллированной

воды).
1.5.1.2. Подготовка ингредиентов для постановки РСК.

растворе pH 7,0 согласно рекомендации изготовителя (рабочее разведение препарата указано на

этикетке ампулы).
1.5.1.2.1.2. Контрольный диагностикум.
Используют коммерческий препарат. Готовят рабочее разведение на физиологическом растворе

pH 7,0 согласно рекомендации изготовителя.

инактивируют в течение 30 минут при температуре +56 °C.

иммунную сыворотку с титром антител по РСК 1:64 и выше. Непосредственно перед постановкой

реакции иммунную сыворотку разводят физиологическим раствором pH 7,0 1:8 и инактивируют в

течение 30 минут при температуре +56 °C.

препарат (сухой). Готовят разведение комплемента 1:10 на физиологическом растворе pH 7,0.

коммерческий препарат в тройном титре (3 минимальные гемолитические дозы). Титр

гемолитической сыворотки указан на этикетке ампулы. Например, если титр гемолитической

сыворотки 1:3000, то в реакции используют сыворотку в разведении 1:1000.

осаждения эритроцитов. Полученный осадок эритроцитов 3-кратно отмывают физиологическим

раствором pH 7,0 при центрифугировании в тех же условиях. Затем осадок эритроцитов

ресуспендируют в физиологическом растворе pH 7,0 до 3% концентрации.

применению хламидийного антигена).

определяют титрованием комплемента per se и в присутствии антигена.

возрастающие дозы комплемента (исходного разведения 1:10) с интервалом в 0,01 мл. Например, 0,01

раствором pH 7,0. Затем в каждую лунку верхнего ряда вносят по 0,1 мл специфического антигена,

взятого в рабочей дозе и по 0,1 мл физиологического раствора, в лунки второго горизонтального ряда

- по 0,2 мл физиологического раствора (2-ой ряд титрование комплемента per se). После этого во все

лунки добавляют по 0,2 мл гемолитической системы, предварительно выдержанной в термостате при

+37 °C в течение 30 минут. Гемолитическая система состоит из смеси равных объемов 3% взвеси

эритроцитов барана и трех минимальных гемолизирующих доз гемолитической сыворотки. После

встряхивания панели ставят в термостат при 37 °C на 30 мин., а затем учитывают результаты

реакции по степени выраженности гемолиза.
За 1 полную единицу комплемента принимают количество комплемента во второй пробирке с

полным гемолизом. Если связывание комплемента проводят на холоде (при +4 °C), то в качестве

рабочей дозы берут одну полную единицу комплемента.