Гормонально-биохимические особенности аллоксановой и стрептозотоциновой моделей экспериментального диабета

2. Древаль А.В., Садыкова Р.Е., Мазо В.К. Влияние несбалансированности пищевого рациона на индуцирование и течение аллоксанового сахарного диабета у крыс // Пробл. эндокринол. 1991. 37. (6). 56–58.

3. Закирьянов А.Р., Плахотний М.А., Онищенко Н.А. и др. Диабетические осложнения у крыс при длительных сроках моделирования сахарного диабета 1-го типа // Патол. физиол. эксперим. терапии. 2007. (4). 21–25.

4. Кендыш И.Н. Регуляция углеводного обмена. М.: Медицина, 1985. 272 с.

5. Обухова Л.А., Дружинина Ю.Г., Пальчикова Н.А. и др. Влияние длительного приема пробиотика на морфофункциональное состояние эндокринной части поджелудочной железы у экспериментальных животных с аллоксановым диабетом // Бюл. СО РАМН. 2006. (2). 171–175.

6. Пальчикова Н.А., Кузьминова О.И., Селятицкая В.Г. Влияние перфторана на чувствительность животных к диабетогенному действию аллоксана и течение экспериментального диабета // Там же. 2006. (3). 113–116.

7. Пальчикова Н.А., Лутов Ю.В., Обухова Л.А., Селятицкая В.Г. Особенности течения экспериментального сахарного диабета при введении в рацион животных природного инсулинового комплекса // Там же. 2007. (2). 114–118.

8. Пальчикова Н.А., Селятицкая В.Г, Шорин Ю.П. Количественная оценка чувствительности экспериментальных животных к диабетогенному действию аллоксана // Пробл. эндокринол. 1987. 33. (4). 65–68.

9. Селятицкая В.Г., Пальчикова Н.А., Кузнецова Н.В. и др. Активность адренокортикальной системы у крыс с высокой и низкой устойчивостью к диабетогенному действию аллоксана // Фундаментальные исследования. 2011. (3). 142–148.

10. Смирнов Л.Д., Инчина В.И., Костин Я.В. и др. Возможности фармакологической коррекции метаболических нарушений при экспериментальном диабете препаратами антиоксидантного типа действия // Биомед. химия. 2004. 50. (3). 502–508.

11. Baydas B., Karagoz S., Meral I. Effects of oral zinc and magnesium supplementation on serum thyroid hormone and lipid levels in experimentally induced diabetic rats // Biol. Trace Elem. Res. 2002. 88. (3). 247–253.

12. Behr G.A., da Silvaa E.G., Romanelli A. et al. Pancreas b-cells morphology, liver antioxidant enzymes and liver oxidative parameters in alloxan-resistant and alloxan-susceptible Wistar rats: a viable model system for the study of concepts into reactive oxygen species // Fundam. Clin. Pharmacol. 2008. 22. 657–666.

13. Briede J., Stivrina M., Stoldere Dz. et al. Effect of cerebrocrast, a new long-acting compound on blood glucose and insulin levels in rats when administered before and after STZ-induced diabetes mellitus // Cell Biochem. Funct. 2007. 25. (6). 673–680.

14. Chatzigeorgiou A., Halapas A., Kalafatakis K., Kamper E. The use of animal models in the study of diabetes mellitus // In Vivo. 2009. 23. (2). 245–258.

15. Celik S., Erdogan S., Tuzcu M. Caffeic acid phenethyl ester (CAPE) exhibits significant potential as an antidiabetic and liver-protective agent in streptozotocin-induced diabetic rats // Pharmacol. Res. 2009. 60. (4). 270–276.

16. Chan O., Inouye K., Vranic M. et al. Hype­ractivation of the hypothalamo-pituitary-adrenocortical axis in streptozotocin-diabetes is associated with reduced stress responsiveness and decreased pituitary and adrenal sensitivity // Endocrinology. 2002. 143. (5). 1761–1768.

17. Elsner M., Tiedge M., Guldbakke B. et al. Importance of the GLUT2 glucose transporter for pancreatic beta cell toxicity of alloxan // Diabetologia. 2002. 45. (11). 1542–1549.

18. Evan A.P., Mong S.A., Connors B.A. et al. The effect of alloxan, and alloxan-induced diabetes on the kidney // Anat. Rec. 1984. 208. (1). 33–47.

19. Evan A.P., Mong S.A., Connors B.A. et al. The effect of streptozotocin and streptozotocin-induced diabetes on the kidney // Ren. Physiol. 1984. 7. (2). 78–89.

20. Lenzen S. The mechanisms of alloxan- and streptozotocin-induced diabetes // Diabetologia. 2008. 51. 216 – 226.

21. Mathews C.E., Leite E.H. Constitutive diffe_rences in antioxidant defense status distinguish alloxan-resistant and alloxan-susceptible mice // Free Radic. Biol. Med. 1999. 27. (3–4). 449–455.

22. Schein P.S., Loftus S. Streptozotocin: Depressi­on of mouse liver pyridine nucleotides // Cancer Res. 1968. 28. 1501–1506.

23. Selyatitskaya V.G., Cherkasova O.P., Pankina T.V., Palchikova N.A. Functional state of adrenocortical system in rats with manifest alloxan-induced diabetes mellitus // Bull. Exp. Biol. Med. 2008. 146. (6). 708–710.

24. Selyatitskaya V.G., Palchikova N.A., Kuznetsova N.V. Adrenocortical system activity in alloxan-resistant and alloxan-susceptible Wistar rats // J. Diabetes Mellit. 2012. 2. (2). 165–169.

25. Shkurupiy V.A, Palchikova N.A., Selyatitskaya V.G. et al. Silica inflammation modulate lipoperoxide and thiobarbituric acid reactive sybstances levels in liver and glucose concentration in blood of alloxan diabetic rats // Mod. Res. Inflamm. 2012. 1. (2). 19–25.

26. Szkudelski T., Kandulska K., Okulicz M. Alloxan in vivo does not only exert deleterious effects on pancreatic B cells // Physiol. Res. 1998. 47. (5). 343–346.

27. Szkudelski T. The Mechanism of alloxan and streptozotocin action in B cells of the rat pancreas // Ibed. 2001. 50. (6). 536–546.

28. Tanaka K., Nanbara S., Tanaka T. et al. Aminotransferase activity in the liver of diabetic mice // Diabetes Res. Clin. Pract. 1988. 5. (1). 71–75.