Исследование иммунного статуса организма человека

• 
  Знать порядок подготовки оборудования, материала и реактивов для проведения исследования;
  
• 
  Освоить техническое выполнение метода
  
• 
  Уметь интерпретировать результаты, получаемые при постановке методов
  

Функциональное состояние ПМЯЛ оценивают по фагоцитарной и бактерицидной активности, хемотаксическим и миграционным свойствам. Активность фагоцитирующих клеток изучают in vivo и in vitro. Клиническое значение. Изучение показателей фагоцитоза имеет диагностическое значение в комплексном анализе и диагностике иммунодефицитных состояний: часто рецидивирующих гнойных воспалительных процессов, длительно незаживающих ранах, склонности к послеоперационный осложнениям. Помогает в диагностике вторичных иммунодефицитных состояний, вызванных лекарственной терапией, а также в оценке эффективности различных фармакологических препаратов при инфекционных заболеваниях,

Бактерицидное действие фагоцитирующих клеток определяется кислородзависимыми и кислороднезависимыми механизмами. Главные кислородзависимые факторы – миелопероксидаза, НАДФ-оксидаза, действие этих ферментов обусловлено образованием мощных бактерицидных продуктов – кислородных радикалов: синглетный кислород (О2), супероксидный анион (O2), гидроксильный радикал (ОН), перекись водорода.

Кислороднезависимые механизмы бактерицидности:

• 
  лизоцим – вызьшает расщепление мукопептидов клеточной стенки бактерий, трансферрин, лактоферрин – лишают пролиферирующие бактерии железа,
  
• 
  катионные белки – повреждают мембраны микроорганизмов,
  
• 
  протеолитические, гидролитические ферменты – переваривание убитых микроорганизмов,
  
• 
  молочная кислота, образующаяся в результате гликолиза и окислительного фосфорилирования – повышает активность гидролитических ферментов.
  

Общепринятым унифицированным методом является НСТ-тест.

Показатели НСТ-теста существенно повышаются в начальном периоде многих острых бактериальных инфекций, тогда как при подостром и хроническом течении инфекционного процесса они, как правило, снижены. Снижение спонтанного и стимулированного НСТ может быть обусловлено патологией самих нейтрофилов (ХГБ – хроническая гранулематозная болезнь, дефицит глюкоза-бфосфат-дегидрогенаэы нейгрофилов) или дефицитом гуморальных факторов, обеспечивающих нормальный фагоцитоз (дефицит иммуноглобулинов, комплемента). Нагрузочный тест является информативными, т.к. характеризует резервы бактерицидной активности нейгрофилов. Санация организма от возбудителя сопровождается постепенной нормализацией параметров НСТ, тогда как резкое снижение обоих величин, в особенности после предшествовашего значительного подъема, свидетельствует о декомпенсации и является неблагоприятным прогностическим признаком.

Получение фагоцитирующих клеток. Источниками ПМЯЛ может быть периферическая кровь, перитонеальный экссудат, клеточная суспензия органов. При исследовании фагоцитарной активности полученные клеточные суспензии культивируют в присутствии объекта фагоцитоза -бактерий, дрожжевых клеток, эритроцитов животных, частиц латекса и через определенное время оценивают активность фагоцитоза различными методами:

Микроскопический метод.

Принцип метода оценки фагоцитоза. Метод основан на определении с помощью светового микроскопа поглотительной и переваривающей способности нейтрофилов крови по отношению к объекту фагоцитоза после их совместной инкубации. Для этого, взвесь пекарских дрожжей и исследуемые лейкоциты инкубируют необходимое время, после чего подсчитывают процент фагоцитирующих клеток и среднее число поглощенных объектов одним фагоцитом.

Исследуют мазки после 30-минутной и 2 - часовой инкубации под иммерсионной системой светового микроскопа. Среди 100 нейтрофилов подсчитают активные (поглотившие хотя бы 1 дрожжевую клетку) и неактивные (не поглотившие ни одной дрожжевой клетки) нейтрофилы. При подсчете для удобства пользуются гематологическим калькулятором: одной клавишей отмечают фагоцитирующие нейтрофилы, другой – нефагоцитирующие, в сумме они должны составить 100 клеток, третьей (трехзначной) клавишей отмечается количество поглощенных дрожжей.

ФП – фагоцитарный показатель, процент клеток, вступивших в фагоцитоз (процент активных нетрофилов). ФЧ – фагоцитарное число, среднее число поглощенных дрожжей активными нейтрофилами

В норме пик поглотительной активности фагоцитов приходится на 30 мин, через 30 минут начинается переваривание поглощенных дрожжей, через 2 часа оно должно закончиться.

Спонтанный НСТ-тест характеризует спонтанную активность нейгрофилов, стимулированный (пирогеналом) – индуцированную активность.

В каждом мазке подсчитывают 100 нейтрофилов, среди которых определяют процент клеток, содержащих отложения диформазана.

% в стимулированном НСТ-тесте

Вычисляют индекс стимуляции (ИС) = –––––––––––––––––––––––––––––

% спонтанном НСТ-тесте

В норме у здоровых людей спонтанный НСТ составляет в среднем до 10%, стимулированный – 40-80%. Величина цитохимического индекса в базальных условиях колеблется в пределах 0.1-0.15, при стимуляции – 0.5-1.5.
Методы изучения клеточного звена иммунитета

Под клеточным иммунным ответом понимают способность CD4 Т-лимфоцитов после распознавания специфического антигена, находящегося на презентирующих клетках, и реагировать на него синтезом ряда цитокинов, ведущих к активации антиген-специфических CD8+ Т-киллеров и СD4+ эффекторов гиперчувствительности немедленного типа, а также активации клеток моноцитарно-макрофагальной системы.

Для характеристики основных процессов клеточного ответа используют следующий перечень тестов:

• 
  Определение общего количества Т-лимфоцитов и их различных субпопуляций;
  
• 
  определение гиперчувствительности замедленного типа с помощью кожных проб;
  
• 
  определение пролиферативного ответа к Т-митогенам, аллоантигенам, антигенам;
  
• 
  определение различных субпопуляций лимфоцитов;
  
• 
  уровень гормонов тимуса;
  
• 
  уровень секретируемых цитокинов;
  
• 
  тест ингибиции миграции лейкоцитов.
  

В настоящее время идентификация субпопуляций Т-лимфоцитов осуществляется с помощью меченных флюорохромом МКА к соответствующим клеточным рецепторам (CD4, CD8, CD16 и др.). В качестве метки могут использоваться флуоресцеин-изотиоцианат (ФИТЦ), фикоэритрин (ФЭ) и др. Прямой метод постановки реакции основан на использовании меченных МКА непосредственно к клеточным структурам. Непрямой вариант заключается в том, что с поверхностными антигенами клетки взаимодействуют специфические немеченые МКА (чаще всего полученные от мыши), а проявление результатов реакции осуществляется с помощью антивидовых (в данном случае антимышиных) меченных иммуноглобулинов. Метка (флюорохром) выявляется при просмотре препарата в ультрафиолетовых лучах (люминесцентная микроскопия).

Естественные киллеры – клетки лимфоидного ряда, ответственные за независимый от продуктов МНС спонтанный лизис опухолевых, вирусмодифицированных, мутировавших клеток.

Активность ЕК определяют в цитотоксическом тесте по лизису меченых радиоактивными изотопами клеток-мишеней, которыми могут служить опухолевые линии клеток Л-562 (миелолейкоз человека), AC-1 и др. В качестве тестируемых клеток-эффекторов используют суспензии спленоцитов, клеток лимфоузлов или мононуклеары периферической крови.

Для тестирования берут освобожденные от эритроцитов ядросодержащие клетки селезенки (А). Клетки линии К-562 метят 3Н-уридином (В).

Реакцию выполняют в 96-луночных планшетах. Готовят клеточные взвеси в различных пропорциях (каждое вносится в 3 лунки планшета):

После инкубации содержимое ячеек переносят на мембранные фильтры и отмывают.

Функциональную активность ЕК оценивают по разнице радиоактивности, выявляемой на сцинтилляционном b-счетчике, в ячейках, содержащих или не содержащих эффекторные клетки. Индекс цитотоксичности (ИЦ) определяют по формуле:

Число импульсов в тестерных ячейках

ИЦ = (1 – -------------------------------------------------------) х 100

Число импульсов в контрольных ячейках

Ответ Т-лимфоцитов на действие антигена или митогена сопровождается каскадом внутриклеточных сигналов, пролиферацией, приобретением эффекторных функций, продукцией цитокинов и их рецепторов. Ослабление иммунных функций Т-лимфоцитов в системе in vivo приводит к снижению способности отвечать на первичные и вторичные антигенные воздействия и негативно отражаются на их способности активироваться in vitro. Т-клеточная активация in vitro приводит к изменению морфологии клеток и переходом их в бластные формы, появлению клеточных рецепторов для ростовых факторов, продукции и секреции цитокинов и экспрессией связанных с активацией клеточных антигенов (таких как CD69, HLA-DR, СВ38,С025,С071идр.)

Существуют различные методы активации лимфоцитов in vitro. Известно довольно много селективно действующих Т- и В-митогенов. Митогены – неспецифические стимуляторы, вовлекающие в процесс бласттрансформации большую часть лимфоцитов независимо от их иммунологической специфичности. Причем одни из них избирательно активируют только Т-лимфоциты, другие – В-лимфоциты и называются соответственно Т- и В-клеточными митогенами. Наиболее часто используемые митогены для Т-лимфоцитов – фитогемагглютинин (ФГА), конканавалин А (КонА), антиСDЗ моноклональные антитела и форбол миристат ацетат (ФМА). Для В-лимфоцитов неспецифическими митогенами являются бактериальный липополисахарид (ЛПС) и митоген лаконоса.

Активация с помощью ФМА ведет к очень быстрому появлению на поверхности Т-клеток рецептора к IL-2 и продукции ряда цитокинов, но при этом практически не наблюдается продукции IL-4 Тh2-лимфоцитами. ФМА является низко специфичным по отношению к клеточным популяциям и активирует В-клетки и моноциты также хорошо, как и Т-клетки. Обеспечивая высокий уровень активации, ФМА в тоже время является токсичным для клеток. Было также показано, что ФМА снижает экспрессию CD4 и СD8-антигенов на поверхности Т-лимфоцитов, что делает проблематичным идентификацию субпопуляций лимфоцитов, продуцирующих цитокины. Несомненным преимуществом ФМА является очень быстрая активация (4-6 часов) и высокий уровень продукции цитокинов.

Активация с помощью анти-CDЗ моноклональных антител ведет к появлению детектируемого уровня цитокинов через 20 часов культивирования. Максимальные значения экспрессии как рецепторов к цитокинам, так и самих цитокинов достигается в промежутке времени 44 - 72 часа культивирования. При этом достигается высокий уровень продукции цитокинов как Тh1-клетками (IL-2, INF), так и Th2 клетками (IL4). Кроме того, при активации с помощью анти-СDЗ антител не происходит снижения экспрессии антигенов CD4 и CD8 на поверхности клеток.

В настоящее время для изучения активации лимфоцитов наряду с определением ДНК и РНК, широко используют определение активационных маркеров, появляющихся на поверхности клеток только после воздействия митогенов.

Лимфоциты, вступившие в контакт с митогеном, реагируют на него бласттрансформацией. Они увеличиваются в размерах, в них усиливается синтез ДНК, РНК и белка, появляются многочисленные митозы. Если измерять образование ДНК или морфологически идентифицировать такие бласты и подсчитывать их процент, можно получить показатель, характеризующий иммунологическую реактивность различных популяций лимфоцитов. Следует отметить, что добавленные в культуру митогены (ФГА, КонА, митоген лаконоса и др) неспецифически стимулируют лимфоциты к бласттрансформации и полученные таким образом показатели характеризуют состояние клеток в данный момент и их общую способность к реакции.

Процессы бласттрансформации лимфоцитов осуществляются в организме постоянно, благодаря чему иммунная система поддерживается в состоянии функциональной готовности. В норме интенсивность этих антигенами, поступающими через слизистые различных органов. РБТЛ, являясь надежным тестом определения иммунологической реактивности различных клеточных популяций под влиянием антигенов, служит критерием специфической реактивности Т- и В-лимфоцитов, а под воздействием неспецифических стимуляторов – показателем общей иммунологической реактивности, косвенно свидетельствуя и о потенциальной способности иммунной системы к реакциям на антигены. Исходя из этого, РБТЛ с антигенами и неспецифическими стимуляторами применяют для оценки иммунологического статуса организма при различных патологических состояниях. Эта реакция с соответствующими антигенами может быть использована для выявления у больных повышенной чувствительности к этим антигенам при инфекционных, аллергических, аутоиммунных процессах. Наиболее широко РБТЛ применяется в клинике с митогенами для оценки общей клеточной реактивности. Снижение пролиферативного ответа на митогены свидетельствует о наличии иммунодефицита, однако механизмы последнего могут быть различными.

Существуют различные методы регистрации бласттрансформированных лимфоцитов:

1. Микроскопический метод – морфологическая идентификация и подсчет процента бластов с помощью микроскопа.

2. Радиоизотопный метод – с помощью включения радиоактивной метки (чаще всего это предшественник ДНК, Н3-тимидин) в синтез ДНК с последующей регистрацией в сцитиляционном счетчике.

3. МТТ-тест – основан на изменении цвета связывающегося с клетками красителя 3-{4,5диметилтиазол-2-ил)-2,5-дифенил 2-тетразолия из синего в желтый. Реакция учитывается в 96-луночном планшете на плашечном фотометре.

4. Метод с использованием BrdU (бромдезоксиуридина), который включается в ДНК вместо тимидина. Регистрация происходит с помощью моноклональных антител к BrdU на проточном цитофлюориметре.

5. Метод оценки с посмощью КФСЭ (5- и 6-карбоксифлуоресцеин-сукцинилмидил эфира). Окрашенные КФСЭ лимфоциты делятся под влиянием митогена, и из одной клетки с большей (исходной) интенсивностью свечения получаются две клетки, интенсивность каждой из которых примерно в два раза ниже исходной и так далее. На цитометрической гистограмме окрашенные КФСЭ клетки располагаются в виде ряда последовательных пиков с уменьшающейся интенсивностью свечения. Клетки анализируются на проточном цитофлюориметре.

1. 
   Оценка фагоцитарной активности нейтрофильных гранулоцитов.
   
2. 
   Расчет ФП, ФЧ, ИЗФ.
   
3. 
   Определение субпопуляций Т-лимфоцитов с использованием моноклональных антител
   
4. 
   Определение цитотоксичности естественных киллеров
   
5. 
   Реакция бласттрансформации лимфоцитов (РБТЛ) с неспецифическими митогенами