Анализ длины теломер



Скачать 335.5 Kb.
Дата26.04.2018
Размер335.5 Kb.
ТипАнализ

Анализ длины теломер

1. Измерение длины теломер методом кПЦР

Для определения средней длины теломер лимфоцитов периферической крови пожилых респондентов применяли метод количественной полимеразной цепной реакции в реальном времени (кПЦР), описанный Каутоном (Cawthon, 2002). С целью получения абсолютных значений средней длины теломер на геном использовали синтезированные олигонуклеотиды (O’Callaghan et al., 2008).

Оборудование: термоциклер АНК32 (ИАП РАН)

Реактивы: коммерческий набор «ПЦР Буфер Б» ЗАО «Синтол».



Состав реакционной смеси для амплификации теломерной последовательности (15мкл):

1) деионизированная H2O

5,1мкл

2) 10хПЦР буферБ (500 мМ KCl, 150 мМ Трис-HCl (pH 8,8), 0,5% глицерин, 0,1% Твин-20)

1,5мкл

3) 2,5 мМ дНТФ

1,5мкл

4) 25 мМ MgCl2

1,5мкл

5) Праймер Tel1

0,08мкл (270нМ)

6) Праймер Tel2

0,09мкл (900нМ)

7)краситель SYBR® Green I

0,05 мкл

8)Taq ДНК-полимераза (5ед/мкл)

0,2мкл

9) ДНК-матрица (10нг/мкл)

5мкл


Праймеры к теломерной последовательности:

Tel1: 5’-ggt ttt tga ggg tga ggg tga ggg tga ggg tga ggg t-3’

Tel2: 5’-tcc cga cta tcc cta tcc cta tcc cta tcc cta tcc cta-3’

Реакционную смесь переносили в пробирки объемом 0,2 мл для проведения кПЦР. После добавления всех компонентов реакционную смесь перемешивали на вортексе, капли собирали коротким центрифугированием.



Температурные режимы проведения кПЦР теломерных повторов:

95оС (5 мин)

5оС (2 мин)

30 циклов

95оС (15 сек)
Состав реакционной смеси для амплификации гена 36В4 (15 мкл):

1) деионизированная H2O

5,1мкл

2) 10хПЦР буферБ (500 мМ KCl, 150 мМ Трис-HCl (pH 8,8), 0,5% глицерин, 0,1% Твин-20)

1,5мкл

3) 2,5 мМ дНТФ

1,5мкл

4) 25 мМ MgCl2

1,5мкл

5) Праймер 36B4u

0,04мкл (300нМ)

6) Праймер 36B4d

0,07мкл (500нМ)

7)краситель SYBR® Green I

0,05 мкл

8)Taq ДНК-полимераза (5ед/мкл)

0,2мкл

9) ДНК-матрица (10нг/мкл)

5мкл


Последовательности праймеров к единичному гену 36B4:

36B4u: 5’-cag caa gtg gga agg tgt aat cc-3’

36B4d: 5’-ccc att cta tca tca acg ggt aca a-3’

Реакционную смесь переносили в пробирки объемом 0,2 мл для проведения кПЦР. После добавления всех компонентов реакционную смесь перемешивали на вортексе, капли собирали коротким центрифугированием.



Температурные режимы амплификации гена 36В4:

9оС (5 мин)

58оС (1 мин)

95оС (15 сек) 35 циклов

Параллельно с исследуемыми образцами ставились пробы с синтезированными олигонуклеотидами заданной длины и последовательности:

36B4: ACC CCA TTC TAT CAT CAA CGG GTA CAA ACG AGT CCT GGC CTT GTC TGT GGA TTA CAC CTT CCC ACT TGC TGA A

Tel: TTAGGG TTAGGG TTAGGG TTAGGG TTAGGG TTAGGG TTAGGG TTAGGG TTAGGG TTAGGG TTAGGG TTAGGG TTAGGG TTAGGG

Среднюю длину теломер в пробе (в т.п.н.) рассчитывают исходя из калибровочного графика для последовательных разведений контрольного образца – синтетического олигонуклеотида заданной длины, несущему теломерную последовательность (O’Callaghan, 2008) (рис. 1). Расчёт средней длины на 1 геном проводят посредством нормировки числа копий теломерных повторов на число копий гена рибосомального фосфопротеина РО 36B4 (T/S), локализованного на 12 хромосоме и представленного в единичной копии (Boulay, 1999).


Рис. 1. Калибровочные графики кПЦР образцов ДНК, выделенной из лимфоцитов периферической крови, с набором праймеров для единичной копии гена (слева) и для теломерной последовательности (справа)


2. Измерение длины теломер методом проточной цитофлуориметрии (Flow-FISH)

Анализ проводили с использованием набора DAKO Telomere PNA Kit/FITC for Flow Cytometry (DAKO, Дания) согласно инструкции. В качестве внешнего контроля использовали специальную клеточную линию Т-лимфобластной лейкемии 1301 (HPA Culture Collections, Великобритания), которая характеризуется стабильной длиной теломер (Hultdin, 1998). Данную культуру поддерживали в среде RPMI с добавлением 10% бычьей сыворотки, 2 мМ L-глютамина и пенициллин/стрептомицина 100 мкг/мл (HyClone, США).

Клетки исследуемого образца и контрольной линии 1301 выравнивали по количеству после отмывки в PBS с добавлением 0,1% BSA. Одну часть образца и 1301 ресуспензировали в 300 мкл гибридизацинного раствора с пептидо-нуклеиновым зондом, меченным флюорохромом FITC и комплементарным теломерной последовательности ДНК, другую – без зонда. Далее проводили денатурацию ДНК при 82 ºС в течение 10 мин и гибридизацию в течение ночи при комнатной температуре в темноте. Затем дважды осуществляли отмывку клеток с инкубацией в отмывочном буфере DAKO при 40 ºС в течение 10 мин. На следующем этапе клетки ресуспендировали в растворе DAKO для окраски ДНК (буфер, содержащий пропидиум йодид и РНКазу А) и выдерживали в течение 30 мин при 37 ºС в темноте.
Рис. 2. Пример измерения длины теломер с использованием логарифмических шкал FS, FL3 и FL1. Верхний ряд – проба без зонда, нижний – с зондом.


Пробы анализировали на проточном цитофлуориметре FC500 (Beckman Coulter, США) с длиной волны 488 нм. Для выделения клеток на стадии клеточного цикла G0/G1 использовали логарифмическую шкалу FL3 (рис. 2). Относительную длину теломер (ОДТ) образца в процентах от длины теломер контрольной линии 1301 с учетом их тетраплоидности высчитывали следующим образом:

ОДТ = (П – А)образец * (2 * 100)/(П – А)1301,



где (П – А) – разница между средней интенсивностью флуоресценции по FL1 пробы с зондом и без зонда (автофлуоресценция).
Скачать 335.5 Kb.

Поделитесь с Вашими друзьями:




©zodomed.ru 2024


    Главная страница